Celleseparation fra blod
Berigelse af celler og optimering af celleseparationsmetoder spiller en afgørende rolle for mange forskere. Der findes forskellige tilgange til sortering af forskellige celletyper, og valget af den rette metode afhænger ofte af celletypen eller celleundergruppen. En af de hurtigere og mere omkostningseffektive metoder til at adskille celler er densitetsgradientcentrifugering. I vores artikel "Celleseparation og celleseparationsmetoder" har vi opsummeret de forskellige muligheder for at berige celler fra heterogene blandinger, som f.eks. blod.
Celletæthed som hjælp til celleseparation
Baseret på de forskellige tætheder af de enkelte blodkomponenter kan disse adskilles ved et-trins-centrifugering med det passende tæthedsgradientmedie. Teknikken er baseret på det faktum, at partikler med forskellige tætheder har forskellige sedimentationshastigheder under centrifugering. Tunge partikler som erytrocytter sedimenterer hurtigt, mens lettere celler som trombocytter sedimenterer langsommere. Den følgende figur viser fordelingen af de vigtigste cellepopulationer i blodet. Erythrocytter har den højeste tæthed og blodplader den laveste.
Fordeling af blodceller som funktion af tæthed
Følgende figur (figur 1) viser fordelingen af blodceller afhængigt af deres tæthed. Trombocytter (1) har den laveste tæthed, erythrocytter (2) den højeste. Antallet af celler pr. population er også vist. Erythrocytter udgør den største population, blodplader den næststørste population.
Figur 1: Illustration af blodets cellepopulationer som en funktion af tætheden
Cellepopulationerne trombocytter (1), monocytter (2), lymfocytter (3), basofile granulocytter (4), neutrofile granulocytter (5), eosinofile granulocytter (6) og erythrocytter (7) er forskellige i tæthed og celleantal. De forskellige tætheder af cellepopulationerne bruges til berigelse ved hjælp af tæthedsgradientmedier.
Tabel: Tæthedsintervaller for blodceller
Type | Blodcelle | Tæthed (g/ml) |
1 | Trombocytter | 1,050 - 1,070 |
2 | Monocytter | 1,060 - 1,068 |
3 | Lymfocytter | 1,067 - 1,077 |
4 | Basofile granulocytter | 1,072 - 1,081 |
5 | Neutrofil granulocyt | 1,079 - 1,098 |
6 | Eosinofile granulocytter | 1,089 - 1,095 |
7 | Erytrocytter | 1.090 - > 1.100 |
Type | Blodcelle | Tæthed (g/ml) |
1 | Trombocytter | 1,050 - 1,070 |
2 | Monocytter | 1,060 - 1,068 |
3 | Lymfocytter | 1,067 - 1,077 |
4 | Basofile granulocytter | 1,072 - 1,081 |
5 | Neutrofiler | 1,079 - 1,098 |
6 | Eosinofile granulocytter | 1,089 - 1,095 |
7 | Erytrocytter | 1.090 - > 1.100 |
Som det fremgår af figuren og tabellen, er tætheden af cellerne eller cellepopulationerne en fordeling omkring en middelværdi. Desuden overlapper tæthederne af de forskellige cellepopulationer hinanden. Området såvel som fordelingen omkring middelværdien er ikke faste værdier. Udsving i tætheden kan påvirkes af forskellige faktorer. En af de vigtigste faktorer, der påvirker celletætheden, er cellernes hydrering. En anden vigtig faktor, der påvirker densiteten af fuldblodsceller, er tiden uden for donororganismen.
Brug af densitetsgradientmedier til densitetsgradientcentrifugering
Med viden om blodcellernes tæthed er det muligt specifikt at berige forskellige cellepopulationer. Tæthedsgradientmedier - opløsninger med en defineret tæthed - bruges til dette formål. Denne tæthed bestemmer separationsgrænsen (cut-off). Celler med en lavere densitet end cut-off samles som et lag over mediet, mens celler med en højere densitet passerer gennem separationsmediet og lægger sig i bunden af røret. Følgende figur viser et typisk billede for separation af fuldblod med et separationsmedium til berigelse afmononukleære celler fra perifert blod - forkortet PBMC.

Figur 2: Fordeling af lag efter densitetsgradientcentrifugering af fuldblod med PBMC-spinmedium. PBMC (2) samles mellem plasma (1) og densitetsmedium (3). Erythrocytter, granulocytter og døde celler passerer gennem mediet og koncentreres i bunden af røret (4).
Tæthedsmedier til forskellige cellepopulationer
PBMC Spin Medium, tæthedsgradientmedium

Steril, klar-til-brug-opløsning til in vitro-isolering af humane PBMC'er fra frisk prøvemateriale
PBMC 24+ Spin Medium, tæthedsgradientmedium

Steril, brugsklar opløsning til in vitro-isolering af humane PBMC'er fra prøvemateriale, der er mere end 12 timer gammelt.
Leuko Spin Medium, tæthedsgradientmedium

Steril, klar-til-brug-opløsning til in vitro-isolering af alle leukocytter fra frisk humant prøvemateriale
Leuko 24+ Spin Medium, tæthedsgradientmedium

Steril, brugsklar opløsning til in vitro-isolering af alle leukocytter fra humant prøvemateriale, der er mere end 12 timer gammelt.
Monocyt-spinmedium, tæthedsgradientmedium

Steril, klar-til-brug-opløsning til in vitro-isolering af humane monocytter fra frisk prøvemateriale
PLT Spin Medium, tæthedsgradientmedium

Steril, klar-til-brug-opløsning til in vitro-isolering af humane blodplader (PLT) fra frisk prøvemateriale